心肌缺血动物模型
心肌缺血动物模型
一、模型构建方法
1.实验动物选择：选用体重 250～350g 的雄性 Wistar 大鼠。Wistar 大鼠具有遗传背景清晰、生长发育稳定等优点，广泛应用于医学实验研究。
2.麻醉与固定：用 3％戊巴比妥钠按 30mg/kg 体重的剂量腹腔注射麻醉，仰卧固定于手术台上。戊巴比妥钠是一种常用的麻醉药物，具有麻醉效果稳定、安全性较高的特点。
3.心电图记录：将针状电极插入大鼠四肢皮下连接心电图机，记录标准 Ⅱ 导联心电图。心电图记录可以实时监测心脏的电活动，为手术过程中的心脏状态提供重要参考。
4.人工呼吸设置：用大半个橡皮球（大小正好套住大鼠头颈部）连接呼吸机进行人工呼吸，呼吸频率 90 次 /min，潮气量 10～12ml/kg，呼吸比设为 1:1。这种人工呼吸方式可以在不切开气管的情况下为大鼠提供充足的氧气，减少手术损伤。
5.手术操作步骤
1）去除左前胸毛发，消毒铺巾，顺肋间隙方向于胸骨左旁第 3、第 4 肋间切开皮肤，长约 1cm，逐层分离皮下组织、肌肉。
2）于第 3、第 4 肋骨间撑开进胸，向右上方推开胸腺，暴露心脏及大血管根部。
3）切开心包，轻轻挤大鼠胸廓，将心脏挤出，或做一个和心脏直径一般大小的带柄环套住心脏轻轻拉出。
4）在左心耳下缘与肺动脉圆锥间寻找左冠脉前降支起始部，用无损伤缝针，进针深度控制在 0.1cm，宽度为 0.1～0.2cm。
5）回纳心脏入胸廓，待动物的数十次心动周期后，收线结扎。
6）观察数分钟后，彻底止血后逐层关胸。关胸过程中于切口内放置排气管，闭胸毕，抽空胸腔积气后拔除排气管。
7）恢复大鼠自主呼吸，清除气管内分泌物，气管切口及颈部切口开放，不作缝合。
6.术后护理
1）手术过程中分别于开胸后、缝针后、结扎后和闭胸后 4 个点记录心电图变化。
2）术后肌内注射青霉素钠 2×100000U/d，连续注射 5d 以防感染。
二、模型特点
1.优点1）制作方法简单可行，动物存活率高。2）用橡皮球套住头颈部进行人工呼吸，不必切开气管，减少了手术损伤。3）术后闭胸可较长时间喂养。
2.不足1）大鼠冠脉侧支循环丰富，变异性较大，模型欠稳定，需标本量较大以充分筛选。
三、比较医学分析
1.大鼠冠脉结扎后，其 6 周时心肌梗死面积较 2 周时明显增加，心电图变化与临床相似。这提示大鼠心肌梗死后同样也经历与临床接近的心室重构过程，心肌梗死模型能较好地反映临床的病理过程。
2.差异之处：人冠脉管壁增龄变化显著，大鼠冠脉无明显增龄变化，二者间种属差异较显著。这种比较解剖学上的差异，又提示用动物实验研究结果解释人类某些机制时需持慎重态度。
动物实验服务平台 | ||
实验动物代养服务 | 动物饲养 | 1.屏障环境饲养 ：1）屏障环境饲养-小鼠 2）屏障环境饲养-大鼠 3）屏障环境饲养-豚鼠 4）屏障环境饲养-地鼠 5）屏障环境饲养-兔2.普通环境饲养 1）普通环境饲养-犬 2）普通环境饲养-猪 3）普通环境饲养-猴 3.一站式实验操作服务 1）给药服务（注射给药：静脉、腹腔、皮下、皮内、肌肉。消化道给药：灌胃、自由摄取、十二指肠、直肠。其他部位给药：呼吸道、皮肤、脑内、关节腔内、脊髓腔内、滴眼、生殖器等。"2）脏器、组织取样服务：脏器、腺体、淋巴结、骨及软骨、肌肉、肿瘤组织、脑组织、脂肪组织等。3）体液样本采集：血液（眼睑采血、剪尾采血、心脏采血）、尿液、脑脊液、胆汁、腔液。4）其他实验操作观察、拍照、称重、滴鼻、剪尾、人工肿瘤测量、解剖等。 |
动物模型构建 | 心脑血管模型 | 脑缺血及再灌注模型/心脏骤停模型/脑外损伤动物模型/体内血栓动物模型/高血压模型/心力衰竭模型/心肌缺血动物模型/心梗动物模型/阿霉素诱导大鼠心肌病模型/脑损伤动物模型/脑出血动物模型/慢性心力衰竭动物模型/高血压动物模模型/动脉粥样硬化动物模型 |
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